對照的目的是對檢測的各個環(huán)節(jié)進(jìn)行監(jiān)控，因此我們按照檢測的流程對對照進(jìn)行梳理。常規(guī)熒光定量PCR的流程是：樣品采集-運(yùn)輸-樣品處理-核酸提取-反轉(zhuǎn)錄（RNA病毒）-擴(kuò)增-結(jié)果讀取。下面看看各個環(huán)節(jié)都可以使用哪些對照:
1.陽性對照（Positive control，PC）和陰性對照（Negative control，NC）陽性對照和陰性對照是指在相同的處理條件下，比如一份已知的感染樣品和一份已知的未感染樣品，都進(jìn)行了提取和擴(kuò)增終獲得了陽性結(jié)果和陰性結(jié)果。陰陽性對照強(qiáng)調(diào)處理過程與樣品一致，并且有明確的預(yù)期結(jié)果。
2.擴(kuò)增對照我們通常說的陽性對照和陰性對照指的是擴(kuò)增試劑盒中附帶的不需要提取的陽性對照和陰性對照，更準(zhǔn)確的定義應(yīng)該是擴(kuò)增陽性對照和擴(kuò)增陰性對照。擴(kuò)增陽性對照含有陽性擴(kuò)增模板，擴(kuò)增陰性對照應(yīng)含有陰性擴(kuò)增模板（基質(zhì)核酸）。擴(kuò)增對照只能監(jiān)控每次擴(kuò)增過程中的擴(kuò)增系統(tǒng)是否正常，不能監(jiān)控采樣、提取和每份樣品的操作過程。如果是檢測RNA樣品的檢測試劑盒，其擴(kuò)增陽性對照使用質(zhì)粒，便無法監(jiān)控反轉(zhuǎn)錄過程。
3.內(nèi)標(biāo)（Internal Control，IC）內(nèi)標(biāo)是指在同一反應(yīng)管中與靶序列共同擴(kuò)增的一段非靶序列分子。內(nèi)標(biāo)有兩種形式，一種是使用天然樣品中含有的內(nèi)參基因作為內(nèi)標(biāo)，另一種是人工添加的內(nèi)標(biāo)。內(nèi)標(biāo)的大特點(diǎn)是與靶序列共同擴(kuò)增，而其他的對照都是獨(dú)立擴(kuò)增。
3.1內(nèi)參基因
通常它們在各組織和細(xì)胞中的表達(dá)相對恒定，在檢測基因的表達(dá)水平變化時常用它來做參照物。內(nèi)參基因通常是持家基因（house-keeping gene）因為其表達(dá)水平受環(huán)境因素影響較小，而且在個體各個生長階段的幾乎全部組織中持續(xù)表達(dá)變化很小。常用的內(nèi)參基因包括GAPDH、β-actin(BETA-actin)、18sRNA、B2M、HPRT和TBP等。
內(nèi)參基因的優(yōu)點(diǎn)是與樣品中的靶基因經(jīng)歷完全相同的處理程序，可以監(jiān)控采樣，運(yùn)輸，核酸提取和擴(kuò)增的全部過程。缺點(diǎn)是不同物種，不同生理狀態(tài)下，不同組織中的內(nèi)參基因存在一定的差異。如果樣品類型是口腔液，咽拭子等樣品，內(nèi)參基因的量很低可能導(dǎo)致實驗不成立。如果檢測的是環(huán)境樣品則內(nèi)參基因可能完全失效。
3.2人工內(nèi)標(biāo)
添加一種不會干擾靶序列擴(kuò)增的人工合成的內(nèi)標(biāo)。現(xiàn)在國外的診斷試劑盒大部分都會將內(nèi)標(biāo)直接添加在反應(yīng)液中與模板一起擴(kuò)增，但是這樣的內(nèi)標(biāo)不能監(jiān)控采樣，運(yùn)輸和核酸提取的過程。
還有另一種形式的內(nèi)標(biāo)，使用人工合成的假病毒，在核酸提取在每一份樣品中加入等量的內(nèi)標(biāo)，這樣就可以監(jiān)控樣品的提取到擴(kuò)增的過程。但是由于是人工添加到樣品中，仍然不能監(jiān)控胞內(nèi)細(xì)菌病毒的釋放情況。
4.核酸提取對照可以使用內(nèi)參基因，假病毒混合基質(zhì)，滅活病毒混合基質(zhì)來監(jiān)控提取到擴(kuò)增的流程。
5.反轉(zhuǎn)錄對照（RT control）可以使用提取好的RNA內(nèi)參基因，RNA假病毒混合基質(zhì)，滅活RNA病毒混合基質(zhì)來監(jiān)控反轉(zhuǎn)錄到擴(kuò)增的流程。
無反轉(zhuǎn)錄對照（no-RT control）含有除反轉(zhuǎn)錄酶以外的所有成分。
6.空白對照（Blank control）6.1無模板空白對照(No template control, NTC)
NTC是指不含有模板（陽性模板或者陰性模板）的對照。目的試劑盒的NC一般都是水或陰性緩沖液，所以NC等同于NTC。其實兩者有不同的作用。
6.2儀器空白對照
NTC是含有引物探針和反應(yīng)液主要監(jiān)控引物探針，反應(yīng)體系有沒有被污染。這里的儀器空白對照我通常使用的是空反應(yīng)管來監(jiān)控儀器有無非特異性的熒光信號。
6.3熒光染料對照
常使用的是ROX染料，由于熒光定量PCR的熒光信號在每個樣品孔會有微小的差異所以使用特定的ROX熒光染料，系統(tǒng)可以根據(jù)ROX熒光染料的信號值來校準(zhǔn)每孔的熒光信號。
7.質(zhì)控品（Quality control, QC）上述環(huán)節(jié)中使用的各種對照大部分是試劑廠家匹配試劑盒使用的產(chǎn)品，有的是實驗室自制，所以整個的監(jiān)控過程可能存在不夠客觀和獨(dú)立。因此在實驗室的對照設(shè)置中每次檢測都建議使用第三方質(zhì)控品，有條件的使用國家有證標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(Reference material ,RM)。由于標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)具有準(zhǔn)確量值和計量溯源性，可以更準(zhǔn)確的評估整個試驗流程的準(zhǔn)確度。
8.定值參考品
醫(yī)學(xué)上的定量檢測試劑盒，需要配套定值參考品用于試劑盒的定量檢測使用。
對照的選擇
從上文可知沒有一種對照是完美的，在檢測中我們要根據(jù)自己的需求來進(jìn)行靈活選擇和搭配。筆者建議每一次檢測時添加一個能對從提取到擴(kuò)增環(huán)節(jié)進(jìn)行監(jiān)控的質(zhì)控品或標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)；每份檢測樣品中添加內(nèi)標(biāo)（如果樣品種類比較多樣建議使用人工內(nèi)標(biāo)，如果樣品類型為相對固定的動物組織建議使用內(nèi)參基因）；擴(kuò)增陽性對照，擴(kuò)增陰性對照，無模板對照和ROX對照。有條件的添加臨床陽性對照和臨床陰性對照，在懷疑提取環(huán)節(jié)或者反轉(zhuǎn)錄環(huán)節(jié)出現(xiàn)問題時使用核酸提取對照和反轉(zhuǎn)錄對照。不定期使用儀器空白對照。
陽性對照與污染
不可否認(rèn)的一個事實是陽性對照可以增加實驗室污染的風(fēng)險。這種污染的來源一種是直接來源于擴(kuò)增陽性對照的污染。對于擴(kuò)增陽性對照來說通常10000拷貝/微升（CT值約25）是比較理想的，但是有一些試劑盒廠家的擴(kuò)增陽性對照設(shè)置在CT值20以下，比大部分陽性樣本都強(qiáng)。
這么高濃度的對照給實驗室?guī)砹司薮蟮奈廴撅L(fēng)險，原因可能僅僅是因為試劑廠家擔(dān)心其陽性對照不穩(wěn)定，長時間存放陽性對照降解。另一種污染來自于擴(kuò)增產(chǎn)物的處理不當(dāng)，或者實驗室的設(shè)計布局不合理。
初篩和確診
對于初篩實驗，我們希望提高真陽性檢出率，即提高診斷敏感性。我們需要檢測系統(tǒng)達(dá)到高檢測效率，因此要在不同環(huán)節(jié)添加陽性對照，確保每個環(huán)節(jié)的檢測效率高。
對于確診實驗，我們希望提高真陰性檢出率，即提高診斷特異性。我們需要確保檢測系統(tǒng)不出現(xiàn)假陽性，因此要在不同環(huán)節(jié)添加陰性對照，減少非必須的陽性對照，甚至要在樣品盤的不同位置中隨機(jī)插入幾個陰性對照，確保實驗過程中沒有被污染。
客服一
