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技術文獻

上海遠慕闡述:ELISA實驗血液樣本收集方法
閱讀次數:1845 發布時間:2016/12/16 11:40:05
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    ELISA實驗血液樣本收集方法:
    全血根據收集的條件,分成不抗凝和抗凝兩種。同時,不抗凝分離出的上層黃色的液體我們稱之為血清;抗凝分離出的上層黃色的液體我們稱之為血漿。
    標本的存放溫度及時間,血清、血漿及細胞分離的方法步驟也是分析前影響檢驗結果的重要因素。抽血后,血細胞因代謝需要,要消耗掉部分營養成分,故對這些成分進行測定時,需及時地離心以分離掉細胞成分。
    采血前個體的準備情況,如空腹時間的長短、采樣時間的確定及采血時患者的姿勢;止血帶應用時間,輸液情況,體育運動,抗凝劑及穩定劑的選用;標本的處理等均可影響到某些檢驗指標的水平。故標本采集過程應標準化,以限度地減少分析前誤差。

    一、不抗凝收集血清:
    1、無添加劑的干燥空管收集:
    血管內壁均勻涂有防止掛壁的藥劑(硅油)。它利用血液自然凝固的原理使血液凝固,等血清自然析出后,離心使用。主要用于血清生化(肝功、腎功、心肌酶、淀粉酶等)、電解質(血清鉀、鈉、氯、鈣、磷等)、甲狀腺功能、藥物檢測、艾滋病檢測、腫瘤標志物、血清免疫學檢測。
    亦可直接用干燥EP管收集全血,充分靜置使得紅細胞充分自然凝固后,離心分離出血清待用或保存。
    2、用促凝管收集:
    采血管內壁均勻涂有防止掛壁的硅油,同時添加了促凝劑。促凝劑能激活纖維蛋白酶,使可溶性纖維蛋白變成不可溶性的纖維蛋白聚體,進而形成穩定的纖維蛋白凝塊,如果想快點出結果時,可采用促凝管。一般靜置半小時到1小時,直接離心分離出血清待用或保存,常用于急診生化。
    3、含有分離膠及促凝劑的采血管收集:
    用促凝管的優點:
    ①、加速紅細胞的凝固,無需長時間的靜置;
    ②、帶有分離膠,有效的將血清分離出來,更好的避免溶血;
    收集血清的缺點:
    ①、需要紅細胞的充分凝固,所需靜置時間較長;
    ②、分離出的血清相對較少,1ml全血不抗凝約只能分離出0.2-0.3ml血清。

    二、抗凝收集血漿:
    收集抗凝全血,輕輕顛倒充分抗凝后,可直接離心分離血漿待用或保存。根據不同抗凝劑的性能特征,選擇合適的抗凝劑。實驗室常用的抗凝劑有肝素的各種鹽、EDTA及枸櫞酸鈉。
    1、肝素抗凝:
    *常用的抗凝劑,一般情況下對相關指標都不會有干擾,同時抗凝比例較大(抗凝劑:全血=1:30),對血液基本沒有稀釋影響。
    2、EDTA抗凝:
    乙二胺四乙酸是一種氨基多羧基酸,可以有效地鰲合血液中的鈣離子,鰲合鈣會將鈣從
    反應點移走將阻止和終止內源性或外源性凝血過程,從而防止血液凝固,與其他抗凝劑比較而言,其對血球的凝集及血細胞的形態影響較小,故通常使用EDTA鹽(2K、3K、2Na)作為抗凝劑。用于一般血液學檢查,不能用于血凝、微量元素及PCR檢查。
    3、枸櫞酸鹽抗凝:
    檸檬酸鈉通過作用于血樣中鈣離子鰲合而起抗凝作用,國家臨床實驗室標準化委員會(NCCLS)推薦為3.2%或3.8%,抗凝劑與血比例為1:9,主要用于纖溶系統(凝血酶原時間、凝血酶時間、活化部分凝血酶時間、纖維蛋白原)。采血時應注意采足血量,以保證檢驗結果的準確性,采血后應立即輕輕顛倒混勻5-8次。由于抗凝比例較小(抗凝劑:全血=1:9),對血液有一定的稀釋,一般不建議。

    三、收集血清、血漿所用離心轉速:
    分離血清或血漿,根據種屬不同,離心轉速也有差異,推薦離心轉速為:
    ①、小鼠:一般1000-1500轉/分,離心8-10分鐘;
    ②、大鼠、兔子:一般2000-2500轉/分,離心8-10分鐘;
    ③、人:一般2500-3000轉/分,離心8-10分鐘。

    四、高脂及溶血因素的影響:
    溶血的影響:
    溶血對某些檢驗指標的的影響不僅取決于所采用的方法,也取決于所用的分析儀器。采用雙波長測定法可在一定程度上消除Hb的顏色干擾,然而Hb的干擾并不能完全消除,尤其是當Hb可以與采用的試劑發生作用時。總的來說,輕微的溶血,對大多數臨床化學指標的測定方法無明顯干擾。嚴重的溶血,可能有兩方面的影響:(1)測定成分在紅細胞內的濃度高于血漿時,導致測定結果偏高;(2)測定成分在RBC內濃度低于血漿時,產生輕微的稀釋效應。

    五、全血或紅細胞的收集及保存
    測定全血或者是紅細胞中相關指標的話,首先需要收集抗凝全血。
    全血:收集抗凝全血,輕輕顛倒充分抗凝后,可直接定量吸取全血,用冷蒸餾水制備溶血液后用于不同指標的檢測;也可定量吸取全血,轉入EP管,低溫凍存(溫度越低越好),測定之前解凍并按比例加入冷蒸餾水制成溶血液用于檢測。紅細胞:收集抗凝全血,輕輕顛倒充分抗凝后,直接離心吸走血漿,留下層紅細胞,加入3倍體積的生理鹽水,輕輕顛倒混勻,500~1000轉/分,離心5分鐘,棄上清留沉淀紅細胞,重復2~3次,至上清液無色為止(洗滌紅細胞)。
    ①、直接定量吸取紅細胞,按比例加入冷蒸餾水制成溶血液待測;
    ②、定量吸取紅細胞,轉入EP管,立即低溫凍存(溫度越低越好),測定之前解凍,并按
    比例加入冷蒸餾水制成溶血液用于檢測(解凍后部分紅細胞會破裂,因此樣本冷凍保存之前必須進行定量)。

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