技術文獻
為啥你的PCR實驗又雙叒叕失敗了?
閱讀次數:1517 發布時間:2022/9/28 10:25:24
先,讓我們來回憶一下PCR鑒定的整個過程,主要包括樣本處理、配PCR體系、擴增、PCR產物電泳四個部分,接下來我們就從這幾個部分盤點PCR操作中的那些坑,請收下這份防坑指南。

1.樣本處理
PCR的第/一個步驟就是處理樣本,這一步出問題后面的也就廢了。取樣后,如果不能馬上處理樣本,短期放4℃保存,長/期放﹣20℃保存;此外,加完裂解液,要注意檢查樣本是否完/全浸沒在裂解液中。
2.PCR體系
簡而言之,PCR體系的要求就是“加對成分加對量”,就好比做一道菜,缺了任何一種材料或者量不合適,味道就不一樣了,而對PCR而言,缺了任何一種成分或者量不對,你就別想看到漂亮的目標條帶了。所以配體系的時候一定要心,不要分心思考類似于/天中午吃什么這種哲學問題,注意所有的成分是否加對了,每種成分的量是否加對了。例如,酶的量很少,吸取的時候要注意有沒有吸到。
3.PCR擴增
就擴增而言,關鍵是要設計對程序,主要就是退火溫度及延伸時間。
退火溫度根據引物的Tm值而定,延伸時間按所用的酶來計算。
4.PCR產物電泳
終于到了令人激動的時刻,擴增好就可以進行瓊脂糖凝膠電泳出結果了。當然,在做之你得提把膠配好,膠的質量好壞也會影響結果。這個環節需要注意的就是選擇合適的膠濃度,膠溶解加熱時不要過久,水分蒸發過多濃度改變,但同時要保/證膠溶解徹/底。添加的染液要注意檢查是否過期變質。倒好膠后插梳子,注意除去氣泡,待膠凝固之后拔梳子要一氣呵成,然后給樣本加loading buffer,/后就可以上樣啦。
這一步我們要注意以下幾點:
可以每個孔加一點loading buffer檢測膠是否有漏。特別是當你覺得膠可能破了的時候一定要進行驗漏;
上樣的時候槍頭垂直加入,不要戳破膠孔,邊加邊抽出,防止噴涌出來,注意不要有氣泡;
上一個樣換一個槍頭,防止污染;
電泳液多次使用的話,/好頻繁更換,防止污染。
5.設置對照組
生物實驗一定要做對照,沒有對照就沒有說服力,而且設置對照有利于分析PCR鑒定失敗的原因。陰性對照及陽性對照所加體系與待測樣本一樣,只是加的樣本分別為無菌水及同個品系野生型小鼠的基因組模板。
陰性對照的意義:若是陰性對照也P出了條帶,說明有污染,實驗結果不可靠。
陽性對照的意義:如果陽性對照也沒P出來,說明體系、條件或是操作有問題。
接下來就給大家分析一下PCR的常見問題以及改進的建議,PCR成功的原因只有一個,而失敗的原因卻千千萬,每個步驟都要細心謹慎,祝大家都能跑出漂亮的條帶。
PCR常見問題及建議
1.沒有條帶
原因1.1 :樣本。樣本放置太久失效;樣本裂解步驟出問題,比如組織沒有浸沒到裂解液中;樣本有裂解到但是DNA濃度低,跟取樣有關,毛發太多組織太少,會導致裂解不出太多DNA。
建議:當然是重新取樣提取DNA了,取樣大小適中,裂解時注意組織是否完/全浸沒到裂解液中。
原因1.2: PCR反應體系。少加酶、引物、dNTP、緩沖液等均會導致目標片段擴增不出來。
建議:配體系加樣時,自行開啟勿擾模式,心無雜念,心里默念:每種成分都加了嗎?量都加對了嗎?
原因1.3: 操作問題。比如是否把酶放置在冰上,常溫放置過久會使酶失活;加各體系的時候,是否有吸取到再加進去。
建議:記住冰在酶在,即使是融酶也要放冰上融,拿手握住酶或是常溫放置,被老板看見是要被打的。
2.抹帶
PCR擴增有時出現涂抹帶或片狀帶或地毯樣帶。
原因:往往是由于酶量過多或酶的質量差、dNTP濃度過高、Mg2+濃度過高、退火溫度過低、或循環次數過多及引物不特異等引起的。
建議:減少酶量或換另一來源的酶;減少dNTP的濃度;適當降低Mg2+濃度;增加模板量;減少循環次數。有效的方法就是提高退火溫度,或者更換引物(引物不特異也會造成抹帶)。
3.條帶比較暗
原因3.1:酶。
建議:條帶弱的情況加多酶量,一半都能得到改善。實驗表明,PCR酶對DNA具有一定的偏好性,如果使用一種酶經過優化也難以獲得理想擴增時,可以嘗試別的PCR酶。
原因3.2:模板、引物。
建議:確保模板和引物的品質,保/證沒有降解。用合適的試劑盒回收樣本,或者進行膠回收得到純凈的DNA樣本是不錯的選擇,或者直接加多模板,提高反應體系中DNA的濃度。
原因3.3:反應體系與條件
建議:增強循環數、降低退火溫度、適當升高Mg2+工作濃度,都可以提高擴增效率,但同時會導致特異性下降,需要根據具體的實驗要求優化合適的條件。
PCR失敗的原因千千萬,操作情況因人而異,所以實驗小白們在操作時可以請師兄師姐幫忙看一下,他們會發現許多你都注意不到的操作錯誤,及時糾正過來就好了,不然每次操作都出同樣的錯誤,而自己又不知道錯在哪,覺得自己是按著步驟和要求來做的啊,怎么就出問題了,反復操作還是這樣,簡直讓人懷疑人生。
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